Meine Forschung ist multidisziplinär und konzentriert sich auf die Rolle von Integrinen und kleinen GTPasen in Wirt-Pathogen-Interaktionen. Insbesondere interessiert mich, wie diese Faktoren die Immunantwort des Wirtes auf Infektionen durch Hantaviren und SARS-CoV-2 regulieren.
Die Forschung im Buranda Lab ist multidisziplinär und konzentriert sich auf die Rolle von Integrinen und kleinen GTPasen in Wirt-Pathogen-Interaktionen. Insbesondere interessiert mich, wie diese Faktoren die Immunantwort des Wirts auf Infektionen durch Hantaviren und SARS-CoV-2 regulieren.
Wir haben Tests zur Messung der Wechselwirkungen zwischen Viren und Wirtszellen entwickelt. Um die mit der BSL-3-Eindämmung verbundenen Biosicherheitsbeschränkungen zu minimieren, haben wir ein vom Biosicherheitsausschuss genehmigtes Protokoll zur UV-Inaktivierung von Virusarten und zur Fluoreszenzmarkierung ihrer Hüllmembranen entwickelt. Dies ermöglicht es uns, unsere Experimente außerhalb der BSL-3-Eindämmung durchzuführen und dabei Geräte zu nutzen, die in der eingeschränkten BSL-3-Umgebung nicht verfügbar sind. So haben wir die inaktivierten und fluoreszenzmarkierten Viruspartikel als Sonden für Arzneimittelforschungstests und zur Untersuchung zellulärer Eintrittsmechanismen eingesetzt.
Im Jahr 2017 arbeitete mein Labor an der Entwicklung von G-Trap mit, einem Durchflusszytometrie-Test mit hohem Durchsatz zur Untersuchung der Auswirkungen von Viren oder Bakterien auf die Nukleotidbindung an kleine GTPasen. Mit diesem Test kann die GTP-Beladung für bis zu sechs Ziele gleichzeitig gemessen werden. Kleine GTPasen sind für Signalwege und Immunreaktionen von entscheidender Bedeutung, sodass wir die Anzahl der diagnostischen Biomarker effektiv auf weniger als fünf beschränken können. Der G-Trap-Test ist ein einzigartig wertvolles Werkzeug für unsere Forschung.
Darüber hinaus bin ich Interimsdirektor der UNM-Zentrum für molekulare Entdeckungen (CMD)In dieser Funktion unterstütze ich die leitenden Prüfärzte (PIs) der UNM bei der Entwicklung von Hochdurchsatz-Assays, die mit Durchflusszytometrie- oder Plattenleseplattformen kompatibel sind. Als kommissarischer CMD-Direktor beaufsichtige ich den Drug Discovery and Repurposing Core (DDRC) des UNM Clinical and Translational Science Center (CTSC), indem ich die Wirkstoffforschungskapazitäten unseres CTSC-Zentrums mit dem nationalen Netzwerk des Clinical and Translational Science Awards (CTSA)-Programms integriere, um die Entdeckung neuer Wirkstoffkandidaten zu fördern.
Wir unterstützen die OPIOIDD-Funktion des CTSC (Core H2) bei der Entwicklung eines Tests zur Bewertung des Einflusses von Opioiden auf die Immunantwort von Patienten mithilfe eines einzelnen Biomarkers (Rac1•GTP), um die positiven und negativen Effekte von Opioid-Medikamenten in der Behandlung chronischer Schmerzen vorherzusagen. Unsere Prämisse ist, dass Schmerzen und Opiate den Aktivierungsstatus angeborener und adaptiver Immunzellen des peripheren Blutes im Vergleich zu Kontrollpatienten in einem unterscheidbaren Ausmaß modulieren. Wir haben kürzlich den G-Trap-Test verwendet, um den Aktivierungsstatus peripherer Blutleukozyten von 105 Schmerzpatienten zu analysieren und dabei Fälle mit potenziellem Risiko einer Opioidkonsumstörung (OUD) zu identifizieren. Wir betrachten dies als einen wesentlichen ersten Schritt zur Früherkennung von OUD und ermöglichen so eine frühzeitige Intervention.
Besuche den Website des Center for Molecular Discovery
Tione Buranda, PhD
Associate Professor
Interimsdirektor, Center for Molecular Discovery (CMD)
IDTC 2140
TBuranda@salud.unm.edu
505-272-1259
Publikationen der letzten zehn Jahre: Link zu PubMed
Die Forschung im Buranda Lab ist multidisziplinär und konzentriert sich auf die Rolle von Integrinen und kleinen GTPasen in Wirt-Pathogen-Interaktionen. Insbesondere interessiert mich, wie diese Faktoren die Immunantwort des Wirts auf Infektionen durch Hantaviren und SARS-CoV-2 regulieren.
Wir haben Tests zur Messung der Wechselwirkungen zwischen Viren und Wirtszellen entwickelt. Um die mit der BSL-3-Eindämmung verbundenen Biosicherheitsbeschränkungen zu minimieren, haben wir ein vom Biosicherheitsausschuss genehmigtes Protokoll zur UV-Inaktivierung von Virusarten und zur Fluoreszenzmarkierung ihrer Hüllmembranen entwickelt. Dies ermöglicht es uns, unsere Experimente außerhalb der BSL-3-Eindämmung durchzuführen und dabei Geräte zu nutzen, die in der eingeschränkten BSL-3-Umgebung nicht verfügbar sind. So haben wir die inaktivierten und fluoreszenzmarkierten Viruspartikel als Sonden für Arzneimittelforschungstests und zur Untersuchung zellulärer Eintrittsmechanismen eingesetzt.
Im Jahr 2017 arbeitete mein Labor an der Entwicklung von G-Trap mit, einem Durchflusszytometrie-Test mit hohem Durchsatz zur Untersuchung der Auswirkungen von Viren oder Bakterien auf die Nukleotidbindung an kleine GTPasen. Mit diesem Test kann die GTP-Beladung für bis zu sechs Ziele gleichzeitig gemessen werden. Kleine GTPasen sind für Signalwege und Immunreaktionen von entscheidender Bedeutung, sodass wir die Anzahl der diagnostischen Biomarker effektiv auf weniger als fünf beschränken können. Der G-Trap-Test ist ein einzigartig wertvolles Werkzeug für unsere Forschung.
Darüber hinaus bin ich Interimsdirektor der UNM-Zentrum für molekulare Entdeckungen (CMD)In dieser Funktion unterstütze ich die leitenden Prüfärzte (PIs) der UNM bei der Entwicklung von Hochdurchsatz-Assays, die mit Durchflusszytometrie- oder Plattenleseplattformen kompatibel sind. Als kommissarischer CMD-Direktor beaufsichtige ich den Drug Discovery and Repurposing Core (DDRC) des UNM Clinical and Translational Science Center (CTSC), indem ich die Wirkstoffforschungskapazitäten unseres CTSC-Zentrums mit dem nationalen Netzwerk des Clinical and Translational Science Awards (CTSA)-Programms integriere, um die Entdeckung neuer Wirkstoffkandidaten zu fördern.
Wir unterstützen die OPIOIDD-Funktion des CTSC (Core H2) bei der Entwicklung eines Tests zur Bewertung des Einflusses von Opioiden auf die Immunantwort von Patienten mithilfe eines einzelnen Biomarkers (Rac1•GTP), um die positiven und negativen Effekte von Opioid-Medikamenten in der Behandlung chronischer Schmerzen vorherzusagen. Unsere Prämisse ist, dass Schmerzen und Opiate den Aktivierungsstatus angeborener und adaptiver Immunzellen des peripheren Blutes im Vergleich zu Kontrollpatienten in einem unterscheidbaren Ausmaß modulieren. Wir haben kürzlich den G-Trap-Test verwendet, um den Aktivierungsstatus peripherer Blutleukozyten von 105 Schmerzpatienten zu analysieren und dabei Fälle mit potenziellem Risiko einer Opioidkonsumstörung (OUD) zu identifizieren. Wir betrachten dies als einen wesentlichen ersten Schritt zur Früherkennung von OUD und ermöglichen so eine frühzeitige Intervention.
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Abteilung für Pathologie
MSC08
Universität von New Mexico HSC
Albuquerque, NM 87131
Laborversand:
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915 Camino de Salud NO
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Kontakt Labor/PI:
Telefon: 505-272-1259
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