Verwalten Sie Ihre Tierpflege und verwenden Sie das Protokoll
Um Tiere für Forschung, Lehre oder Versuche einsetzen zu können, muss der Tiernutzer alle mit diesem Privileg verbundenen Pflichten erfüllen. Zu diesen Verpflichtungen gehören:
ARF-Chirurgieeinrichtungen
Allgemeine Anforderungen an Operation, Überleben und Nicht-Überleben, für alle Arten sind in einer ausführlichen Zusammenfassung beschrieben. "Allgemeine chirurgische Richtlinien". Eine zweite Zusammenfassung mit dem Titel "Nagetierchirurgische Richtlinien" beschreibt spezifische Informationen und Anforderungen für Operationen an Labornagern.
Richtlinien für die Überlebenschirurgie
Überlebenschirurgie, unabhängig von der Spezies, muss aseptisch durchgeführt werden. Chirurgische Eingriffe an Nicht-Nagetierarten, die größer als die Laborratte sind, müssen in speziellen Operationseinrichtungen (ARF-Chirurgieeinrichtung) durchgeführt werden. Allgemeine Anforderungen an Operation, Überleben und Nicht-Überleben, für alle Arten sind in einer ausführlichen Zusammenfassung beschrieben. "Allgemeine chirurgische Richtlinien". Eine zweite Zusammenfassung mit dem Titel „Chirurgische Leitlinien für Nagetiere“ beschreibt spezifische Informationen und Anforderungen für Operationen an Labornagern. Im Allgemeinen sind eine aseptische Technik, eine angemessene Anästhesie und Analgesie, eine angemessene intraoperative Patientenüberwachung und Vorkehrungen für die postoperative Versorgung minimale Anforderungen für die Durchführung von Überlebensoperationen bei allen Tierarten. Die Prinzipien der aseptischen Chirurgie beziehen sich auf Folgendes: Sterilisation von Instrumenten, Vorbereitung des Chirurgen, Vorbereitung der Operationsstelle und alle chirurgischen Verfahren vom Hautschnitt bis zum Verschluss. Anästhesieüberwachung ist zwingend erforderlich und muss bei Spezies größer als Mäuse und Ratten dokumentiert werden.
Richtlinien für nicht überlebensfähige (terminale, akute) Operationen
Non-Survival-Chirurgie ist definiert als Operation, die unter Vollnarkose durchgeführt wird und der Patient sich nicht von der Narkose erholt. Euthanasie wird am Ende der experimentellen chirurgischen Eingriffe durchgeführt, normalerweise mit einer Überdosis eines Anästhetikums, das intravenös verabreicht wird. Nicht überlebenswichtige Verfahren erfordern die Verwendung sauberer Instrumente und Vorkehrungen für eine angemessene Überwachung der Anästhesietiefe.
Kleinere Eingriffe wie Injektionen, orale Dosierung, Beobachtungen, Wiegen usw. können in den Tierräumen durchgeführt werden. Das ARF stellt Behandlungsräume mit Inhalationsanästhesie, Induktionskammern, Nasenkegeln, Abgasreinigungsgeräten und Wiederherstellungseinheiten für solche Verfahren bereit, bei denen eine Anästhesie zur Fixierung oder Immobilisierung wünschenswert sein kann, wie Blutentnahme, Biopsien, iv Injektionen usw.
Umgang und Zurückhaltung aller Tiere, insbesondere Nagetiere, ist eine Fähigkeit, die durch Übung und richtiges Training entwickelt wurde. Tiere sollten auf sanfte, feste und schnelle Weise fixiert werden, um das Potenzial für Stress und Schäden sowohl für die fixierten als auch für den Fixierer zu minimieren. Das ARF bietet praktische Workshops für Personen an, die eine Einführung in die richtigen Rückhaltemethoden benötigen.
Die gesamte Unterbringung und Haltung von Versuchstieren erfolgt durch die Mitarbeiter des ARF gemäß den Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren. Wenn ein von der IACUC genehmigtes Protokoll abweichende Wohnbedingungen beschreibt, muss das Personal des ARF über die Ausnahme informiert werden. Eine Standard Operating Procedure (SOP) muss vom Forscher entwickelt, vom ARF-Tierarzt genehmigt und im Tierraum ausgehängt werden. Übernimmt der PI die Haltung der Tiere, so ist im Raum ein Protokollblatt auszuhängen, auf dem die Haltungspflichten des wissenschaftlichen Personals festgehalten werden.
Euthanasie von Versuchstieren
Euthanasie ist der Akt der Herbeiführung eines humanen Todes. Bei Versuchstieren ist Euthanasie am häufigsten der Endpunkt eines jeden Experiments. Es ist zwingend erforderlich, dass die Forscher die Euthanasie mit Respekt vor dem Leben des Tieres durchführen und verstehen, dass Schmerzen, Angst und Stress während des Verfahrens minimiert werden müssen. Die für die Sterbehilfe angewandte Technik sollte eine schnelle Bewusstlosigkeit, gefolgt von einer Beendigung der Herz- und Atemfunktionen und schließlich des Verlusts der Gehirnaktivität gewährleisten. Unabhängig davon, welche Methode gewählt wird, muss darauf geachtet werden, den mit dem Verfahren verbundenen Stress und die Angst zu reduzieren. Die Richtlinien der American Veterinary Medical Association zur Euthanasie haben 2020 einen Bericht erstellt. Dieser Bericht enthält spezifische Richtlinien für jede Tierart und akzeptable Methoden der Euthanasie. Sehen Sie sich diesen Bericht an unter: http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. Um Euthanasie an Tieren durchführen zu können, muss die Person angemessen geschult und in dem Verfahren kompetent sein. Euthanasie-Methoden müssen in dem von der IACUC genehmigten Tierpflege- und Verwendungsprotokoll detailliert beschrieben werden. Die angewandten Methoden müssen Maßnahmen umfassen, um sicherzustellen, dass der Tod eingetreten ist; dass es keine Chance für das Tier gibt, sich zu erholen und das Bewusstsein wiederzuerlangen. Schulungen sind über das ARF oder das Office of Animal Care and Compliance erhältlich.
Euthanasie von Maus- und Rattenföten und Neugeborenen
Spätgeborene Föten und neugeborene Nagetiere können Schmerzen und Leiden erfahren. Für die Durchführung einer humanen Euthanasie von spätgeborenen Föten und Neugeborenen müssen zusätzliche Anforderungen in Betracht gezogen werden. Der NIH Animal Research Advisory Council hat entwickelt Leitlinien für die Euthanasie von Nagetierföten und Neugeborenen. Lesen Sie diese Empfehlungen zur Bestimmung akzeptabler Methoden der Euthanasie für Maus- und Rattenföten und Neugeborene.
Euthanasie von Nagetieren mit Kohlendioxid
Kohlendioxid-Erstickung ist die gebräuchlichste Methode, um kleine Nagetiere (z. B. Mäuse und Ratten) einzuschläfern. Es muss eine geeignete Methodik angewendet werden, um das Potenzial für Angst, Stress und Schmerzen im Zusammenhang mit hohen CO .-Konzentrationen zu reduzieren2. Der NIH Animal Research Advisory Council hat veröffentlicht Richtlinien für die Euthanasie von Nagetieren mit Kohlendioxid. Die vRG hat diese Empfehlungen als SOP (Standard Operating Procedure) in der vRG in der Nähe von CO2-Stationen veröffentlicht. Wenn CO2 Euthanasie in Forschungslabors angewendet wird, muss der PI beim vRG die geeignete Ausrüstung anfordern und die vom vRG bereitgestellte SOP posten.
Die Tierressourceneinrichtung genehmigt den Zugang. Das Universitätsklinikum stellt Ausweise aus und HSC Lock Shop Technologies stellt Schlüssel aus.
Die Tierressourceneinrichtung genehmigt den Zugang. Das Universitätsklinikum stellt Ausweise aus und HSC Lock Shop Technologies stellt Schlüssel aus.
Das vRG ist für die Beschaffung ALLER Forschungstiere zuständig. ALLE Tieranfragen und alle Tierbestellungen MÜSSEN NUR vom ARF-Büro aufgegeben werden. Alle Anfragen und Anfragen zur Verwendung von Tieren sind an das vRG-Büro zu richten. Im Folgenden sind die Verfahren zur Beschaffung von Tieren aufgeführt:
Um Tiere von einer anderen akademischen oder Forschungseinrichtung aufnehmen zu können, muss der Transfer zunächst vom HSC VRG-betreuenden Tierarzt genehmigt werden. Die Zulassung basiert auf der Feststellung des Gesundheitszustands und des SPF-Status (Specific Pathogen Free) der Tiere. Um diese Bewertung abzuschließen, muss der HSC-VRG-Tierarzt einen Gesundheitsüberwachungsbericht prüfen, der vom Veterinärpersonal der Ursprungsanstalt vorgelegt werden muss. Tiertransferverfahren:
Alle Tiere, die im Rahmen des ARF gehalten werden, müssen nach einem aktuellen, von der IACUC genehmigten Tierpflege- und Verwendungsprotokoll gehalten werden. Wenn Sie Tiere von einem Protokoll in ein anderes übertragen möchten, müssen Sie die Tierprotokollnummern kennen. Wenn die Tiere von einem PI zu einem anderen transferiert werden, müssen auf genehmigten Protokollen die Namen und Protokollnummern der PIs verfügbar sein.
Die Wahl des geeigneten Tiermodells hängt von mehreren Faktoren ab, die mit der Art der Krankheit oder dem Gesundheitsproblem zusammenhängen. Die Rolle der Genetik, Krankheitsanfälligkeit, Größe; und anatomische und physiologische Ähnlichkeiten sollten bei der Auswahl eines Tieres berücksichtigt werden, das für die Forschungsziele am besten geeignet ist. Das Veterinärpersonal steht für Beratungen zur Verfügung, um den Forscher bei der richtigen Auswahl zu unterstützen. Die Prinzipien der humanen Tierforschung schreiben vor, dass der Forscher die am wenigsten empfindungsfähige verfügbare Spezies auswählt, die für die Forschungsziele geeignet ist.
Mäuse und Ratten sind seit dem Abschluss der Genomprojekte für Mensch, Maus und Ratte zu den am häufigsten verwendeten Tiermodellen in der biomedizinischen Forschung geworden. Die folgenden Seiten werden für Genotyp-Verfügbarkeit und Phänotyp-Informationen empfohlen. Diese Seiten enthalten Informationen, die bei der Entscheidung für ein geeignetes Tiermodell hilfreich sind:
Das HSC-Tierforschungsprogramm ist beim USDA (85-R-0014) als Forschungseinrichtung registriert, hat eine Zusicherungserklärung bei PHS / OLAW (A3350-01) und ist vollständig von der Association for Assessment and Accreditation of . akkreditiert Laboratory Animal Care International (AAALAC Accreditation Unit File No. 000222).
Das ARF ist AAALAC-akkreditiert und hält sich an alle Bestimmungen der PHS-Policy zur Pflege und Verwendung von Labortieren, den Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren sowie das Tierschutzgesetz und die Durchführungsbestimmungen.
Für die Einreichung von Vorschlägen bei NIH, die Wirbeltiere betreffen, das „Worksheet for Review of the Vertebrate Animal Section (VAS)“ (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) sollte Bezug genommen werden, um sicherzustellen, dass die erforderlichen Informationen zum Tierprogramm bereitgestellt werden. NIH veröffentlichte zusätzliche Leitlinien für die Erstellung des VAS (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf), vom 18. Januar 2012. Darüber hinaus stellt ARF eine Mustervorlage zur Verfügung, um Informationen zu unterstützen, die unter den Absätzen 3 bis 5 dieses Dokuments angefordert werden ARF-Kesselplatten-Checkliste.
Das UNM HSC unterhält 40,000 sq.ft. of Animal Resource Facility (ARF) Space, geleitet von Kevin O'Hair, DVM, der am College of Laboratory Animal Medicine (ACLAM) zertifiziert ist und Fakultätsmitglied der Abteilung für Pathologie der School of Medicine. Das ARF befindet sich im angrenzenden Erdgeschoss des Gebäudes Medizinische Grundlagenwissenschaften (BMSB) und der Biomedizinischen Forschungseinrichtung (BRF). Die ARF wird als spezifisch pathogenfreie (SPF) Einrichtung betrieben, die für den aktuellen Stand der Wissenschaftsforschung unerlässlich ist und enthält spezielle Barriereeinrichtungen für die Zucht von Labormäusen. Das VRG bietet auch technische und veterinärmedizinische Unterstützung für alle Bildungs- und Forschungsprojekte mit Versuchstieren. Das ARF umfasst Tierhaltungsbereiche und spezielle Nutzungsbereiche wie Behandlungsräume, Verfahrenslabore, Bildgebungsbereiche, Forschungsbereiche für biologische Gefahren und chemische Exposition, Operationsräume und Nagetierhaltungsräume. Das Tierpflegeprogramm wird von Christie Wilcox, AS, RLATG, Operations Manager, und einem Team von sechs Labortiertechnikern unterstützt.
Spezialisierte Einrichtungen:
Alle Tiere des Health Sciences Center sind in von der Animal Resources Facility (ARF) verwalteten Einrichtungen untergebracht. Tierhaltungsräume sind temperatur- und feuchtigkeitsgeregelt. Die Einrichtung wird von einer Vollzeittierärztin, Tara G. Ooms Konecny, DVM, DACLAM (ARF-Direktorin und behandelnde Tierärztin), geleitet und ist mit einem Einrichtungsleiter (RLATG), 3 leitenden Tierpflegetechnikern (LAT) und 7 Tierpflegetechnikern besetzt. entweder der ARF-Direktor oder ein klinischer Notfall-Tierarzt ist jederzeit verfügbar. Das Tierpflegepersonal führt routinemäßige Haltungsverfahren durch (z. B. Käfigreinigung, Fütterung und Tränken) und untersucht die Tiere täglich, um ihren Zustand zu beurteilen. Klinische Beobachtungsraumblätter werden täglich vom Tierpflegepersonal ausgefüllt und an den Betriebsleiter gesendet. Diese Berichte werden an den Tierarzt weitergeleitet, wenn klinische Bedenken gemeldet werden. Das Laborpersonal überwacht die Tiere, wenn Behandlungen durchgeführt werden, und die Zustandsbewertungen der einzelnen Tiere nach dem Eingriff werden aufgezeichnet, wenn dies auf der Grundlage der erwarteten Morbidität als notwendig erachtet wird und dies gemäß den jeweiligen von der IACUC genehmigten Protokollen erforderlich ist. Das Veterinärpersonal überwacht die Tiere in ihren Heimkäfigen alle zwei Wochen oder sofort, wenn klinische Bedenken von Tierpflege- oder Laborpersonal gemeldet werden. Wenn Tiere Anzeichen einer Infektion, Krankheit oder Belastung aufweisen, berät sich das Veterinärpersonal mit dem Laborpersonal, um geeignete Antibiotika, Analgetika oder andere Arzneimittel/unterstützende Maßnahmen zu empfehlen. Der Tierarzt kann aufgrund von Tierschutzbedenken eingreifen oder Euthanasie empfehlen.
Der ARF-Direktor ist verantwortlich für die Verwaltung des Veterinary Care Program, die Aufsicht über das Facility Management, die Supervision, die Ausbildung und die Compliance. Das tierärztliche Betreuungsprogramm umfasst Bestimmungen zur Gesundheitsüberwachung aller Tiere, spezielle Qualitätssicherungsprogramme für Nagetierpopulationen, ein Quarantäne-Testprogramm und spezifische Behandlungsrichtlinien.
Der ARF-Direktor bietet auch tierärztliche Überprüfung und Beratung für alle Ausbildungs- und Forschungsprotokolle an, die dem institutionellen Tierpflege- und -verwendungsausschuss vorgelegt werden.